2003年6月15日，养鹅户王某饲养的2000只雏鹅发生腹部膨大、脐部肿胀、脐孔破溃等为特征的疾病，发病率在15%左右，经诊断为雏鹅脐炎型大肠杆菌病。一、发病情况因当时一直连续下雨，阴雨天气长达20多天，育雏舍内地面潮湿，没有干的垫料，不能及时更换；饲养密度过大（38只/平方米），通风不良，温度又偏低（白天17℃左右，夜间还要低）。鹅群于5日龄发病，7日龄后明显增多，每日死亡100多只。养户曾投给青霉素饮水，不见效。二、临床症状病雏表现精神委靡，食欲减少或废绝；腹部膨大，脐部发炎肿胀，有的脐孔破溃，皮肤变薄，严重者颜色青紫；两肢无力，嗜睡，饮水减少。有的表现下痢，除精神、食欲差以外，可见排出泥土样粪便。一般多在发病后1～3日内死亡，极少数拖延至5～7天。三、病理变化先后剖检病死鹅15只、濒死雏鹅5只，其病理变化基本相似。病雏脐孔周围皮肤水肿，皮下瘀血、出血、水肿，水肿液呈淡黄色或黄红色；喙、脚蹼干燥。有的心包积液，心冠脂肪有出血点；肝肿大，呈青铜色，并有少量散在淡黄色坏死灶；十二指肠有出血点或出血斑，有的可见肠黏膜脱落。四、诊断1.涂片镜检：以无菌操作采取肝、脾组织触片和心血涂片，革兰氏染色后镜检，见大量两端钝圆的革兰氏阴性短小杆菌。2.细菌培养：以无菌操作取病死雏的肝及脐部组织分别接种于营养琼脂平板、麦康凯琼脂平板及伊红美蓝琼脂平板上，置于恒温箱内经37℃培养24小时后，各种培养基上均有菌落形成。在营养琼脂平板上形成圆形、中等大小、直径1～3毫米、微隆起、光滑、不透明、边缘整齐、灰白色的菌落；在麦康凯琼脂平板上，形成边缘整齐、稍隆起、表面光滑湿润、直径1.5～2.5毫米、粉红色的圆形菌落；在伊红美蓝琼脂平板上形成黑红色，有金属光泽的圆形菌落。将培养后的典型菌落制片，革兰氏染色、镜检，可见与涂片检查相同的革兰氏阴性、两端钝圆的短杆菌。3.生化试验：将分离菌做生化试验，该菌能分解葡萄糖、麦芽糖、山梨醇、甘露糖、果糖、蔗糖、产酸产气；不分解淀粉、肌醇和尿素；M?R试验阳性，V-P试验阴性。4.致病力试验：用培养物接种4只健康的17克重的小白鼠，每只腹腔注射0.3毫升10倍稀释的菌液，接种后分别在27～32小时死亡，而4只对照组小白鼠健活。剖检死亡小白鼠可见心内外膜出血，脾肿大，有出血点，肝肿大。用肝组织涂片后染色、镜检，可见到大量与上述一致的革兰氏阴性、两端钝圆短杆菌。5.药敏试验：挑取典型菌落均匀涂布于普通琼脂平板上，用多种抗菌药纸片做抑菌试验，结果，该菌对氟苯尼考、盐酸二氟沙星高敏。五、治疗清除潮湿垫料、粪便和垃圾重新铺上经消毒的干燥垫料；加强舍内的通风并增温；育雏舍内（带鹅）和舍外用0.5%的百毒杀消毒，每天1次；饲槽、饮水器及用具用2%的苛性钠溶液洗刷，再用清水冲洗后使用；调整饲养密度为15只/平方米。用10%的氟苯尼考水溶剂饮水，每10升水中加入1克（即10%氟苯尼考加入10克），连用5天。饲料中添加微特赢（一种微生态制剂，可以与抗生素类药物合用），每100千克饲料加0.2克，连用7天。同时，在饮水中添加电解多维和维生素C。经采取上述综合措施后的第3天，雏鹅的死亡大大减少。在治疗过程中，对一些没有治疗价值的雏鹅进行淘汰，除重症死亡外，其余病雏鹅基本康复。7天后，鹅群中不再有新的发病和死亡。六、小结1.大肠杆菌是条件性致病菌，在育雏期，遇上20多天的阴雨天气，使育雏舍潮湿，垫料不能更换，再加通风不好，密度大，卫生状况不佳等，是此次发病的主要原因。2.该批雏鹅质量差，大肚脐比例多，脐环闭合不全，是感染大肠杆菌的原因之一。3.鉴于大肠杆菌广泛存在于自然界，规模化密集饲养的雏鹅舍中一旦发病，难以有效控制。因此，防止本病的发生，主要是平时做好经常性的预防工作。购雏鹅时淘汰大肚脐、脐环闭合不全的雏鹅，消除病菌侵入和感染门户；做好消毒工作，保持鹅群周围环境清洁卫生；加强饲养管理，育雏要通风、干燥，垫料勤换和消毒，喂以全价配合饲料，并补充足量的维生素和矿物质。4.在雏鹅初饮时，在水中添加不易产生耐药性的广谱抗生素（如氟苯尼考、盐酸二氟沙星等）、电解多维和维生素C，连续饮用5～7天，可有效控制本病。
